經(jīng)典型瞬時(shí)受體電勢通道TRPC是一類通透鈣離子的非選擇性陽離子通道1,與最早在果蠅感光系統(tǒng)中發(fā)現(xiàn)的TRP通道的序列相似性最高2,3,并且可以被第二信使DAG所激活。根據(jù)序列相似性以及通道的電生理特性,TRPC3/6/7形成了一個(gè)亞類4。TRPC3/6/7通道參與多種神經(jīng)活動,例如TRPC3在中樞神經(jīng)系統(tǒng)高表達(dá),參與神經(jīng)生長因子BDNF信號轉(zhuǎn)導(dǎo)5,同時(shí)TRPC3還與神經(jīng)突觸信號傳遞以及運(yùn)動協(xié)調(diào)有關(guān)6,7。TRPC6通道可以促進(jìn)神經(jīng)元存活以及興奮性突觸的形成等8,9。除此之外,TRPC3/6/7通道也參與肌源性血管收縮,血壓調(diào)節(jié)等過程,并且和多種疾病的發(fā)生有關(guān),比如病理性心肌肥大,癌癥發(fā)生,糖尿病等10。其中人源TRPC6基因功能獲得性突變(GOF)會引發(fā)局灶節(jié)段性腎小球硬化癥(FSGS)11,12。因此,TRPC6通道的抑制劑有望用于治療該類疾病。2007年有低分辨率冷凍電鏡研究表明TRPC3的胞質(zhì)區(qū)可能存在一個(gè)空腔13,但由于分辨率所限,以及重構(gòu)所得電子密度存在較多噪音,該空腔的具體結(jié)構(gòu)細(xì)節(jié)并不清楚。2017年陳雷課題組和呂偉-杜鵑課題組分別獨(dú)立報(bào)道了TRPC6和TRPC3的高分辨率冷凍電鏡結(jié)構(gòu)14,15,這些結(jié)構(gòu)展示了該通道的整體架構(gòu),并顯示在TRPC3/6通道中的確存在一個(gè)“胞質(zhì)內(nèi)空腔”。隨后,Amgen公司報(bào)道了TRPC6通道與抑制劑及激活劑的復(fù)合物結(jié)構(gòu)16。盡管如此,該領(lǐng)域仍然存在著重要的科學(xué)問題尚待解決。比如,此前研究表明Ca2+可以調(diào)控TRPC3/6/7通道的活性17-22,但其調(diào)控機(jī)制以及FSGS相關(guān)突變體的致病機(jī)制仍不清楚。
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2022年1月19日,生命科學(xué)聯(lián)合中心、北京大學(xué)未來技術(shù)學(xué)院分子醫(yī)學(xué)研究所陳雷研究組在Neuron雜志上報(bào)導(dǎo)了Ca2+對人源TRPC3/6調(diào)控的結(jié)構(gòu)機(jī)制以及FSGS相關(guān)突變體的致病機(jī)制。
在對TRPC3/6通道研究的過程中,作者們使用內(nèi)面向外式膜片鉗技術(shù)發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)側(cè)Ca2+可以抑制TRPC3通道本底電流,而對TRPC6通道本底電流展現(xiàn)出低濃度激活高濃度抑制的現(xiàn)象。隨后他們發(fā)現(xiàn)Ca2+可以提高純化的TRPC3/6蛋白樣品的熱穩(wěn)定性,確定了Ca2+可以與TRPC3/6蛋白直接結(jié)合。為了明確Ca2+調(diào)控TRPC3/6的結(jié)構(gòu)機(jī)制,作者們解析了TRPC3/6通道的一系列高分辨率冷凍電鏡結(jié)構(gòu)。通過結(jié)構(gòu)比較,作者們在TRPC3/6中發(fā)現(xiàn)了3個(gè)Ca2+結(jié)合位點(diǎn)(CBS1-3)。隨后的點(diǎn)突變、電生理和熱穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)證實(shí)了CBS1為Ca2+抑制性位點(diǎn),CBS3為Ca2+激活性位點(diǎn)。Ca2+在抑制性CBS1的結(jié)合導(dǎo)致TRPC3/6通道胞內(nèi)區(qū)的結(jié)構(gòu)更加緊湊,使陽離子無法從胞質(zhì)內(nèi)空腔中順利流出,從而使電流減弱。進(jìn)一步地,作者們使用全細(xì)胞記錄模式,發(fā)現(xiàn)Ca2+通過抑制性CBS1和激活性CBS3對DAG激活的TRPC3/6電流同樣產(chǎn)生調(diào)節(jié)作用。
結(jié)構(gòu)顯示在FSGS疾病中發(fā)現(xiàn)的TRPC6 GOF點(diǎn)突變都分布于胞內(nèi)區(qū)亞基間相互作用的界面上,有可能破壞了亞基間的相互作用。為了驗(yàn)證此假說,作者們解析了GOF突變體的結(jié)構(gòu),并通過電生理和熱穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)GOF突變體減弱了抑制性Ca2+結(jié)合位點(diǎn)(CBS1)的作用,使胞內(nèi)區(qū)結(jié)構(gòu)變得松散,從而打開了陽離子從胞質(zhì)內(nèi)空腔向胞質(zhì)區(qū)流出的孔道。
最后作者們解析了BTDM以及SAR7334與TRPC6結(jié)合的高分辨率結(jié)構(gòu)(2.9 ?),明確了這些抑制劑與TRPC6結(jié)合的模式。
綜上所述,本項(xiàng)研究通過結(jié)構(gòu)解析以及功能驗(yàn)證,確定TRPC3/6通道在胞質(zhì)區(qū)有一個(gè)抑制性Ca2+結(jié)合位點(diǎn)CBS1。當(dāng)Ca2+濃度較高時(shí),該位點(diǎn)會結(jié)合Ca2+,促進(jìn)多個(gè)胞質(zhì)區(qū)結(jié)構(gòu)域之間的緊密堆積,從而抑制陽離子從TRPC通道胞質(zhì)內(nèi)空腔向細(xì)胞質(zhì)的流動。當(dāng)Ca2+濃度較低時(shí),Ca2+從該位點(diǎn)解離,使胞質(zhì)區(qū)呈現(xiàn)較為松散的結(jié)構(gòu),從而打開了離子從胞質(zhì)內(nèi)空腔向胞質(zhì)區(qū)流動的通路。這個(gè)抑制位點(diǎn)提供了Ca2+對TRPC通道的負(fù)反饋調(diào)節(jié)。TRPC通道在跨膜區(qū)還具有激活型Ca2+結(jié)合位點(diǎn)CBS3。抑制型和激活型Ca2+結(jié)合位點(diǎn)的作用相互疊加,導(dǎo)致了TRPC通道對胞內(nèi)鈣離子濃度復(fù)雜的響應(yīng)。而在FSGS患者中發(fā)現(xiàn)的TRPC6 GOF突變破壞了TRPC6胞質(zhì)區(qū)的抑制性CBS1的功能,但不影響激活型CBS3的功能,從而使突變體通道在有Ca2+流入的情況下發(fā)生正反饋而持續(xù)激活,腎臟足細(xì)胞Ca2+離子過載,最終引發(fā)FSGS疾病的發(fā)生(圖1)。此外,不同小分子抑制劑BTDM和SAR7334在TRPC6上的結(jié)合位點(diǎn)迥異,并且使TRPC6處于不同的關(guān)閉構(gòu)象,從而為基于結(jié)構(gòu)的藥物設(shè)計(jì)提供了理論支持。
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圖1 Ca2+通過CBS1-3對TRPC3/6及FSGS相關(guān)突變體的調(diào)控模式圖
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本項(xiàng)研究的第一作者為北京大學(xué)未來技術(shù)學(xué)院分子醫(yī)學(xué)研究所博士研究生郭文君;博士生湯晴麟、韋淼,博士后康云路和吳驚香參與了部分實(shí)驗(yàn);陳雷研究員為通訊作者。本項(xiàng)研究中的小分子BTDM由迪哲醫(yī)藥有限公司張小林博士提供;北京大學(xué)分子醫(yī)學(xué)研究所周專教授及其博士生李祎曼、北京大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院王世強(qiáng)教授、北京師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院王友軍教授以及北京航空航天大學(xué)楊亞雄博士在電生理實(shí)驗(yàn)和數(shù)據(jù)分析方面給予了指導(dǎo)和幫助。本工作獲得國家自然科學(xué)基金委、生命科學(xué)聯(lián)合中心等經(jīng)費(fèi)支持。該工作的冷凍電鏡樣品制備、篩選和采集在北京大學(xué)電鏡室和冷凍電鏡平臺上完成,得到了李雪梅、郭振璽、邵博、裴霞和王國鵬等人的幫助。該項(xiàng)目的部分?jǐn)?shù)據(jù)處理獲得了北京大學(xué)CLS計(jì)算平臺及未名超算平臺的硬件和技術(shù)支持。
陳雷實(shí)驗(yàn)室主要研究膜蛋白特別是與代謝類疾病和心血管疾病相關(guān)的重要膜蛋白的工作機(jī)制(http://www.imm.pku.edu.cn/kytd/rcdw/34142.htm)。陳雷實(shí)驗(yàn)室長期招聘博士后,希望有細(xì)胞生物學(xué)、生物化學(xué)、電生理、抗體制備或結(jié)構(gòu)生物學(xué)背景的博士加入該實(shí)驗(yàn)室。
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參考文獻(xiàn)
1. Feng, S. TRPC Channel Structure andProperties. Adv. Exp. Med. Biol. 976, 9-23,doi:10.1007/978-94-024-1088-4_2 (2017).
2. Wes, P. D. et al. TRPC1, a human homolog of aDrosophila store-operated channel. Proc.Natl. Acad. Sci. U. S. A. 92,9652-9656 (1995).
3. Zhu, X., Chu, P. B.,Peyton, M. & Birnbaumer, L. Molecular cloning of a widely expressed humanhomologue for the Drosophila trp gene. FEBSLett. 373, 193-198,doi:10.1016/0014-5793(95)01038-g (1995).
4. Guo, W. & Chen,L. Recent progress in structural studies on canonical TRP ion channels. Cell Calcium 83, 102075, doi:10.1016/j.ceca.2019.102075 (2019).
5. Boulay, G. et al. Modulation of Ca(2+) entry bypolypeptides of the inositol 1,4, 5-trisphosphate receptor (IP3R) that bindtransient receptor potential (TRP): evidence for roles of TRP and IP3R in storedepletion-activated Ca(2+) entry. Proc.Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96,14955-14960, doi:10.1073/pnas.96.26.14955 (1999).
6. Hartmann, J. et al. TRPC3 channels are required forsynaptic transmission and motor coordination. Neuron 59, 392-398,doi:10.1016/j.neuron.2008.06.009 (2008).
7. Hartmann, J. &Konnerth, A. TRPC3-dependent synaptic transmission in central mammalianneurons. J Mol Med (Berl) 93, 983-989,doi:10.1007/s00109-015-1298-7 (2015).
8. Jia, Y., Zhou, J.,Tai, Y. & Wang, Y. TRPC channels promote cerebellar granule neuronsurvival. Nat. Neurosci. 10, 559-567, doi:10.1038/nn1870 (2007).
9. Zhou, J. et al. Critical role of TRPC6 channelsin the formation of excitatory synapses. Nat.Neurosci. 11, 741-743,doi:10.1038/nn.2127 (2008).
10. Chen, X., Sooch, G.,Demaree, I. S., White, F. A. & Obukhov, A. G. Transient Receptor PotentialCanonical (TRPC) Channels: Then and Now. Cells9, doi:10.3390/cells9091983 (2020).
11. Reiser, J. et al. TRPC6 is a glomerular slitdiaphragm-associated channel required for normal renal function. Nat. Genet. 37, 739-744, doi:10.1038/ng1592 (2005).
12. Winn, M. P. et al. A mutation in the TRPC6 cationchannel causes familial focal segmental glomerulosclerosis. Science 308, 1801-1804, doi:10.1126/science.1106215 (2005).
13. Mio, K. et al. The TRPC3 channel has a largeinternal chamber surrounded by signal sensing antennas. J. Mol. Biol. 367,373-383, doi:10.1016/j.jmb.2006.12.043 (2007).
14. Fan, C., Choi, W.,Sun, W., Du, J. & Lu, W. Structure of the human lipid-gated cation channelTRPC3. Elife 7, doi:10.7554/eLife.36852 (2018).
15. Tang, Q. et al. Structure of thereceptor-activated human TRPC6 and TRPC3 ion channels. Cell Res. 28, 746-755,doi:10.1038/s41422-018-0038-2 (2018).
16. Bai, Y. et al. Structural basis forpharmacological modulation of the TRPC6 channel. Elife 9, e53311,doi:10.7554/eLife.53311 (2020).
17. Kamouchi, M. et al. Properties of heterologouslyexpressed hTRP3 channels in bovine pulmonary artery endothelial cells. J Physiol 518 Pt 2, 345-358, doi:10.1111/j.1469-7793.1999.0345p.x (1999).
18. Lintschinger, B. et al. Coassembly of Trp1 and Trp3proteins generates diacylglycerol- and Ca2+-sensitive cation channels. J. Biol. Chem. 275, 27799-27805, doi:10.1074/jbc.M002705200 (2000).
19. Shi, J. et al. Multiple regulation by calciumof murine homologues of transient receptor potential proteins TRPC6 and TRPC7expressed in HEK293 cells. J Physiol 561, 415-432,doi:10.1113/jphysiol.2004.075051 (2004).
20. Zhang, Z. et al. Activation of Trp3 by inositol1,4,5-trisphosphate receptors through displacement of inhibitory calmodulinfrom a common binding domain. Proc. Natl.Acad. Sci. U. S. A. 98,3168-3173, doi:10.1073/pnas.051632698 (2001).
21. Zitt, C. et al. Expression of TRPC3 in Chinesehamster ovary cells results in calcium-activated cation currents not related tostore depletion. J. Cell Biol. 138, 1333-1341,doi:10.1083/jcb.138.6.1333 (1997).
22. Boulay, G.Ca(2+)-calmodulin regulates receptor-operated Ca(2+) entry activity of TRPC6 inHEK-293 cells. Cell Calcium 32, 201-207,doi:10.1016/s0143416002001550 (2002).
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